PRACTICA 9: TINCION DE CAPSULAS

PRACTICA NUMERO 9
7/11/17


FUNDAMENTOS Y OBJETIVOS:

Las cápsulas son acumulación de material mucoso que rodean la pared celular de algunas bacterias. Su naturaleza suele ser polisacárica, que aunque puede variar según la composición del medio de cultivo. Las cápsulas se alteran con el color debido a su naturaleza glucídica, por lo cual en esta tinción no se realiza la fijación. Los microorganismos utilizados para esta tinción son: microorganismos capsulados.

MATERIALES:
  • Microorganismos capsulados de 24 horas
  • Asa de platino
  • Mechero Bunsen
  • Asa de siembra de platino
  • Portaobjetos
  • Microscopio

REACTIVOS:

  • Nigrosina 1%
  • Fucsina

PROCEDIMIENTO:

  1. Extensión, desecación y NO FIJACIÓN
  2. Coloración con fucsina diluida durante 2 minutos.
  3. Lavar y secar.
  4. Ponemos 1 gota de Nigrosina 1% en un extremo y la extendemos por metodo de cuña (Dos portas)
  5. Secar y Observar

RESULTADOS:


Comentarios

Publicar un comentario

Entradas populares de este blog

PRACTICA 3:SIEMBRA EN PLACA DE PETRI Y EN TUBO SLANT.

Imagen
PRACTICA NUMERO 3 3/10/17-6/10/17 OBJETIVOS: El objetivo de esta práctica no es simplemente hacer que la colonia crezca, sino que lo que queremos es aislarla. Para ello utilizaremos un método, el de siembra por agotamiento de asa en zig-zag, que se tarda más en decir el nombre que en realizar la práctica. Trabajaremos siempre cerca de la llama (a no ser que dispongamos de cabinas de seguridad), ya que crea un radio de esterilidad de unos 15-20 cm. Cuánto más cerca trabajemos de este llama menor riesgo de contaminación existirá. UTILIDAD CLINICA: Esta tecnica se va a utilizar para poder realizar nuevas siembras de microorganismos. FUNDAMENTOS: Para poder estudiar el crecimiento bacteriano y obtener poblaciones de las bacterias de interés, es necesario cultivarlas. En esta ocasión vamos a cultivarlas en un medio sólido en placa de Petri y en tubo Slant. Utilizaremos un medio de cultivo general, como el agar nutritivo. APARATAJE: -Mechero Bunse...
Leer más

PRACTICA 4: EXÁMEN EN FRESCO DE MICROORGANISMOS

Imagen
PRACTICA NUMERO 4 6/10/17 OBJETIVOS:   Observar la movilidad de los microorganismos   Diferenciar la movilidad bacteriana, el movimiento por arrastre (debido a corrientes de convección) y el movimiento browniano (todas las bacterias se mueven en la misma dirección).   Observar la presencia de Protozoos, amebas, huevos, quistes y larvas de parásitos, gusanos adultos, hongos dermatofitos, etc. APARATAJE: -Microscopio. -Mechero Bunsen. MATERIALES: -Portaobjetos y cubreobjetos. -Asas de platino. -Muestras( agua estancada y actimel). -Aceite de inmersion. REACTIVOS: -No se utiliza reactivos en esta practica. PROCEDIMIENTO: Procedimiento para la gota de agua estancada. -Colocamos una gota de muestra sobre el porta, usando el asa de siembra previamente flameada. -  Colocamos el cubre sobre el porta evitando que forme burbujas, para ello: Colocar primero una arista y luego el resto. RESULTADOS: ...
Leer más

PRACTICA 14: UROCULTIVO Y LAMINOCULTIVO.

Imagen
PRACTICA NUMERO 14 OBJETIVO: Vamos a realizar un urocultivo para la determinación de diferentes microorganismos presentes en la muestra de orina. Sirve para el diagnostico de las posibles enfermedades o infecciones urinarias. MATERIALES  Asas de siembra desechables Placa de Petri con medio CLED, McConkey, EMB o Cromógenos:     .  CLED : medio diferencial, la siembra se realiza con un asa calibrada. La mitad de la placa se utiliza para la cuantificación y la otra mitad para aislamiento.     .  McConkey : medio selectivo para enterobacterias en el cual la siembra se siembra mediante agotamiento de estrías para obtener aislamiento de colonias.    -Muestra: orina   Estufa PROCEDIMIENTO: 1. Introducir el asa de siembra en la muestra de orina, y hacer una siembra mediante el siguiente método, Utilizamos un medio CLED y un medio McConckey. 2. Incubar a 37ºC durante 18/24 horas. R ESUL...
Leer más