MICROBIOLOGIA

PRACTICA NUMERO 10 28/11/17 OBJETIVOS: Poder identificar cocos gram + que pueden ser micrococus, staphilococus, aureus. MATERIALES: -Asas de siembra. -Portaobjetos. -Agua oxigenada. PROCEDIMIENTO: Catalasa: -Primero para identificar si es un coco gram + se realiza la catalasa: -Sobre un portaobjetos se deposita una colonia de 24 h., se añade una gota de H2O2  al 3%, sin mezclar con el asa y sin invertir el orden. - El inmediato desprendimiento de burbujas se considera una prueba positiva. - Las colonias se deben tomar de un medio sin sangre ya que los eritrocitos tienen actividad de catalasa y pueden falsear los resultados. - Esta prueba también puede realizarse en tubo. *El resultado es POSITIVO * -Como la catalasa es positiva se realiza: Oxido-fermentacion: -Se siembra la muestra, en picadura, en dos tubos que contienen el medio de Hugh Leifson  (O/F) adicionado de un 1% glucosa. -A uno de los tubos se añade parafin

PRACTICA NUMERO 9 7/11/17 FUNDAMENTOS Y OBJETIVOS: Las cápsulas son acumulación de material mucoso que rodean la pared celular de algunas bacterias. Su naturaleza suele ser polisacárica, que aunque puede variar según la composición del medio de cultivo. Las cápsulas se alteran con el color debido a su naturaleza glucídica, por lo cual en esta tinción no se realiza la fijación. Los microorganismos utilizados para esta tinción son: microorganismos capsulados. MATERIALES: Microorganismos capsulados de 24 horas Asa de platino Mechero Bunsen Asa de siembra de platino Portaobjetos Microscopio REACTIVOS: Nigrosina 1% Fucsina PROCEDIMIENTO: Extensión, desecación y NO FIJACIÓN Coloración con fucsina diluida durante 2 minutos. Lavar y secar. Ponemos 1 gota de Nigrosina 1% en un extremo y la extendemos por metodo de cuña (Dos portas) Secar y Observar RESULTADOS:

PRACTICA NUMERO 8 31/10/17 FUNDAMENTO: Las esporas son formas de resistencia que se forman en el interior del citoplasma de algunas bacterias (Bacillus y clostridium). La pared de las esporas es bastante impermeable por lo que cuesta trabajo teñirlas, pero una vez teñidas, tras la decoloración perderá el color toda la bacteria excepto las esporas. Para llevar a cabo esta tinción se necesitan cultivos de al menos de 48 horas para que la bacteria haya tenido tiempo suficiente de formar esporas. OBJETIVO Observar las esporas MATERIAL: Portaobjetos mechero Bunsen Asa de siembra Paralelas Microscopio Hisopo Papel de filtro REACTIVOS: Verde malaquita (colorante) Safranina o fucsina Cultivos de 48h  PROCEDIMIENTO: 1. Extensión, desecación y fijación. 2. Tinción:  Cubrir con verde malaquita durante 1 minuto Calentar, con un hisopo de algodón empapado en alcohol y prendido con la llama del mechero hasta la emision de vapores. Mantener caliente d

PRACTICA NUMERO 7 27/10/17 OBJETIVOS: Detectar las bacterias ácido alcohol resistentes mediante la tinción de Ziehl Nielsen FUNDAMENTOS: Algunas bacterias denominadas ácido alcohol resistentes presentan una pared celular muy rica en ácidos grasos de cadena larga, denominados ácidos micólicos, que la hacen resistente a la decoloración con alcohol ácido, una vez que hayan sido teñidos con colorantes básicos. MATERIALES: Equipo de tinción Mechero Bunsen Microscopio Portaobjetos Asa de siembra de platino REACTIVOS Fucsina fenicada Alcohol- ácido Azul de metileno Agua destilada PROCEDIMIENTO: Extensión, desecación y fijación Echar fucsina fenicada durante 1 minuto en frio y 5 minutos a emisión de vapores. Decoloración con alcohol-ácido unos 30 segundos, hasta que se elimine el rojo. Lavar con agua destilada. Azul de metileno durante 1-2 minutos Lavar, secar y observaR. RESULTADOS:

PRACTICA NUMERO 6 24/10/17 OBJETIVO: La tinción de Gram se utiliza para la visualización de bacterias. Se utiliza tanto para la morfología como para diferenciar las bacterias Gram positivas de las Gram negativas. Positivas azules y negativas rojas. FUNDAMENTOS: -Diferenciar las bacterias Gram (+) de las Gram (-) en función de la distinta composición de su pared bacteriana. -Realizar correctamente diferentes técnicas de tinción con el fin de obtener resultados óptimos. -Observar las bacterias Gram (+) teñidas de azul o violeta -Observar las bacterias Gram (-) teñidas de rojo o rosa. -Visualizar la morfología y disposición de las bacterias presentes en las muestra. MATERIALES: Portaobjetos Microscopio Mechero Bunsen Paralelas Frasco lavador Pipetas pasteur Asas de siembra de Platino REACTIVOS: Cristal Violeta (GRAM 1) Lugol Agua destilada Decolorante (alcohol-acetona). Colorante de contraste Safarina.(GRAM2) PROCEDIMIENTO: 1. Ex

PRACTICA NUMERO 5 17/10/17 OBJETIVOS: Vamos a observar bacterias procedentes  del yogourt,   Levaduras y    Bacterias del sarro dental. UTILIDAD CLINICA: -Realizar frotis bacterianos a partir de muestras solidad y liquidas, realizar tinciones simples de bacterias y levaduras, observar la morfologia bacteriana y comenzar a distinguir los diferentes tipos de agrupaciones existentes. FUNDAMENTOS: -El yogurt es un producto lacteo producido por la fermentacion natural de la leche. A nivel industrial la fermentacion se realiza añadiendo a la leche una mezcla de Streptococcus termophilus que produce poco acido pero es muy aromatico y Lactobacillus bulgaricus que es muy acidificante. -Las levaduras son hongos microscopicos unicelulares. En la industria son importantes por su capacidad para realizar la fermentacion de hidratos de carbono, produciendo distintas sustancias como el pan. -El sarro dental es un deposito consistente y adherente formado por restos prote

PRACTICA NUMERO 4 6/10/17 OBJETIVOS:   Observar la movilidad de los microorganismos   Diferenciar la movilidad bacteriana, el movimiento por arrastre (debido a corrientes de convección) y el movimiento browniano (todas las bacterias se mueven en la misma dirección).   Observar la presencia de Protozoos, amebas, huevos, quistes y larvas de parásitos, gusanos adultos, hongos dermatofitos, etc. APARATAJE: -Microscopio. -Mechero Bunsen. MATERIALES: -Portaobjetos y cubreobjetos. -Asas de platino. -Muestras( agua estancada y actimel). -Aceite de inmersion. REACTIVOS: -No se utiliza reactivos en esta practica. PROCEDIMIENTO: Procedimiento para la gota de agua estancada. -Colocamos una gota de muestra sobre el porta, usando el asa de siembra previamente flameada. -  Colocamos el cubre sobre el porta evitando que forme burbujas, para ello: Colocar primero una arista y luego el resto. RESULTADOS: OBSERVACI